分布
分布較廣；澳洲、歐洲、日本、北美、南美和南非都有報導。
寄主植物
自然寄主範圍很窄，主要是藜科植物，很多都是產生褪綠斑駁，但是歐洲也發現很多果樹和葡萄也感染藜草花葉病毒。有實驗證明葡萄藤的分離株可經實驗方法侵染其它科植物（Bercks&Querfurth，1969）。
Chenopodium spp：葉片褪綠斑駁
Vitis spp.，Prunusdomestica：幾乎不侵染
Atriplex suberecta：矮化，葉片變形
實驗寄主範圍和症狀
莧色藜（ChenoPodbo amaranticoI）：機械接種的植株先出現褪綠局斑（圖3） 然後出現黃色斑點和星狀病斑（圖1、2）。經種子感染的植株出現斑駁和斑點症狀，也可能不表現任何症狀。單用水或緩衝液潤濕的手指抹擦葉片，不可能引起病害症狀（Dias &Whterwort，1967；Engelbrecht &van Regenmortel，1968）
昆諾藜和牆生藜的症狀與莧色藜的症狀相似。
甜菜（Beta vulgaris）非常輕微的系統花葉。
繁殖寄主
莧色黎、昆諾藜或牆生藜都適於保存病毒。
菠菜（SPinacia oleracea）是純化病毒的良好材料。
鑑定寄主
莧色藜和昆諾藜都出現局斑，但是否適於作為鑑定寄主，還未曾試驗。
危害情況
不少藜屬植物產生褪綠斑駁，其中許多種類可作為其他植物病毒的實驗測定寄主。實驗植物，如莧色藜（ChenoPodbo amaranticoI）、昆諾藜（C.quinoa）和牆生藜（C.murale），都可帶這種病毒，但經種子傳播無症狀表現。
經濟重要性
SoMV在雜草的經濟影響較小。栽培作物和觀賞植物很少受到病毒侵染，經濟作物如被侵染，症狀一般為和性花葉或無症狀。
形態特徵
質粒結構
RNA病毒，質粒等軸對稱，無包膜，直徑 2 6nm。葉子汁液含有很多病毒粒子。有些分離物病毒粒子在pH4的條件下比pH7更穩定。經磷鎢酸或醋酸鈾染色的質粒的電鏡照片分辨不出任何形態亞基（圖4），
只有一種沉降組分。高度稀釋下的沉降係數s（20，w）：104±2S
藜草花葉病毒分子量：6．3 ± 0．4 × 106（Kado&Black，1968）。
擴散係數：（D20/10-7厘米2/秒）：l．2 9（根據 Kado計算，未發表）；1.15（Paul&
Huth，1970）。
等電點：PH4．4。
部分比容（計算）0.70 ±0.05厘米3/克。
260毫微米吸收值（毫克/毫升，1厘米光程）：4.9。
260/280比值（未校正光散射）：1.49；230/260比值；1.67。
質粒組成
RNA：分予量約1.3 ×106，約占質粒重的 2 0%，可能是單鏈。核苷酸的克分子百分比：G 26.0，A 23.2，C 27.6，U 23.2。
蛋白質：
質粒僅含一種蛋白質亞基。C末端胺基酸是賴氨酸，N末端封閉。胺基酸組成（克分子%）： 丙氨酸8.5；精氨酸4.6；天冬氨酸9.1；半胱氨酸1.1；谷氨酸6.8；甘氨酸9.1；組氨酸1.7；異亮氨酸5.1； 亮氨酸6.8；賴氨酸6.8；甲硫氨酸2.8；苯丙氨酸2.3；脯氨酸6.8；絲氨酸8.0；蘇氨酸7.4；色氨酸1.7；酪氨酸4.0；纈氨酸7．4（Kado，1967）根據胺基酸分析提出，蛋白質亞基的分子量為 l．92× 104（Kado，1967）。根據中性十二烷基硫酸鈉/聚丙烯酸胺凝膠電泳指出，蛋白質亞基的分子量可能等於3.1× 104（Hill，1971）。
汁液穩定性
昆諾藜汁液中，病毒熱鈍化點（10分鐘）約90 ℃，稀釋限點約10-7。在23℃下保持侵染性約60天。在冰凍條件下，侵染性可長期保持。
生物學
株系
所有分離株的血清學反應都一致。這些分離株包括：KirkPatriok等（1965）及 Bancroft和 Tolin（1967）的蘋果隱症病毒；Holling和 Stone（1967）的香石竹 698號分離株；Silye等（1958）的藜花葉病毒；Kado（1966；1967）的藜星斑病毒；Teakle（1968）的魚草（ChenoPodlum trigonon）病毒；葡萄藤的分離株（Bercks&Querfurth，1969）。除了葡萄藤分離株外，其它所有的分離株都很相似，因為葡萄藤分離株可經實驗方法感染莧科、葫蘆科、豆科和茄科植物
血清學
病毒的免疫原性很強。緩衝液含1%瓊脂或瓊脂糖凝膠的雙擴散試驗，試管中的沉澱試驗，1%瓊脂或瓊脂糖凝膠的免疫電泳試驗，都可以用。通常在凝膠雙擴散試驗和免疫電泳試驗中，形成一條沉澱帶。試管沉澱試驗中，沉澱呈顆粒狀。
親緣關係
未檢出該病毒與下列病毒之間有血清關係：苜蓿花葉病毒、南芥草花葉病毒、菜豆莢斑駁病毒、蠶豆斑駁病毒、豇豆花葉病毒、黃瓜花葉病毒、黃瓜花葉病毒Y毒株、葡萄扇葉病毒、桃黃芽花葉病毒、南方菜豆花葉病毒，南瓜花葉病毒、菸草壞死病毒、番茄斑萎病毒、蕪青黃花葉病毒和野黃瓜花葉病毒。
病毒與細胞和組織的關係
所有的組織都能感染病毒。細胞質內的病毒呈膜包裹的晶狀排列，引起"假核仁"一緻密、環形、粒狀的小區（Milne，1967）。
細胞病理學
病毒顆粒在葉肉細胞和木質部都有發現，但在韌皮部沒有發現病毒粒體。在單個的細胞中病毒存在於細胞質和液泡中。受侵染細胞的內含體在細胞質中呈晶體狀
純化
每公斤接種的葉組織可得病毒200～500毫克。
下列兩種方法均可採用：
1．Kado（1967）的方法：用 pH7.5的 0.05M二乙胺四乙酸鈉研磨冰凍組織。過濾後，加入0．5倍體積的冷正丁醇，攪拌，經離心使乳濁液澄清。吸出上層的正丁醇，用玻璃棉過濾液相。高低速離心5次，使病毒濃縮，將病毒沉澱再懸浮在PH7.0的0.1M磷酸緩衝液中。
2.Steer（1956）的丁醇一氯仿法。
傳播途徑
介體傳播
據報導，豌豆潛葉蠅（Liriomyza langei）、甜菜葉蟬（Circulifer tenellus）一種蝽（Halticus citri）和桃蚜（Myzus Persicae）都可能是介體（Bennet& Costa，1961）。然而Dias和Waterworth）沒能證實桃蚜傳毒。
種子傳播
病株子代幼苗的感染率高達83%，感染率的高低取決於種子的取樣（Bennett&Costa，1961；Dias&waterworth，1967 ；Kado，1967）。通過種子而感病的植株很少出現症狀，甚至毫無症狀。
菟絲子傳播
加州菟絲子（cuscuta californica）不傳毒，它顯然對感染是免疫的（Bennett&Costa，1961）。
檢疫與防治
檢測方法
因為SoMV經常是潛隱或症狀較輕，檢測時要轉接到無SoMV的指示植物如莧色藜、昆諾藜，然後進行血清學檢測，或者是以血清學方法在初始寄主上檢測。檢測系統侵染的寄主如Chenopodium spp,因為病毒含量很高，較易檢測，而在另外一些寄主上，因病毒含量很低且移動很慢，即使用DAS-ELISA檢測也較為困難(Cardin et al., 1995)。
防治
很多時候，因為SoMV只產生很輕的症狀，發作也是零星的發作，因此認為對其的控制不是很重要。它能引起的問題是污染莧科指示植物的種子，使其無症帶毒，這會給以後的研究帶來不便。
無化學或其他控制介體的方法。
注
藜屬植物的種子可能攜帶藜花葉病毒，這一事實表明，當這些品種的植物作為其它病毒的寄主時，會出現污染的問題，尤其因為感病的子代幼苗可能不出現什麼症狀。所以，從表面上看似乎不帶藜花葉病毒的植株上收集種子時，務須謹慎。
