膠原纖維

纖維母細胞在PDGF、FGF、IL-1及TNF等刺激下合成由三股α-肽鏈互相扭結呈螺鏇狀的前膠原(procollagen),前膠原分泌到細胞外後,有的被內切酶切去兩端的球形結構而成為原膠原(tropocollagen),相鄰的原膠原分子互相錯開1/4平行排列交聯成膠原纖維(collagenous fibril),在電鏡下呈現64nm周期性橫紋。膠原纖維再聚合則成較寬的膠原纖維。從化學成分不同可將膠原分為15種,間質中的膠原纖維主要由Ⅰ、Ⅲ型膠原組成醫學教,育網|蒐集整理。網狀纖維是由Ⅲ型膠原組成的膠原纖維,由於其纖維表面粘附有較多的蛋白多糖,故染色具有嗜銀性,PAS反應陽性。

膠原纖維是三種纖維中分布最廣泛,含量最多的一種纖維。廣泛分布於各臟器內。在皮膚、鞏膜和肌腱最為豐富。膠原纖維染色主要用於和肌纖維的鑑別。

介紹

膠原纖維(collagenous fiber)膠原纖維在疏鬆結締組織中排列成束,彼此交織吻合,纖維束常有分支。纖維具有韌性,抗牽引力強。電鏡觀察,膠原纖維由更細的微原纖維(microfibrils)組成。微原纖維有特殊的橫帶,其周期為64nm。每條微原纖維有一序列的明暗帶。暗帶中比明帶有較多游離的化學根,所以貯留較多的電鏡切片染色劑
膠原纖維主要含有膠原蛋白胺基酸甘氨酸、脯氨和羥脯氨酸等。膠原是唯一含羥脯氨酸較多的蛋白質,因此,測定羥脯氨酸的量能確定組織中膠原的含量。膠原蛋白占全身蛋白質的30%。聚合成膠原的微原纖維的蛋白質分子稱為原膠原分子。

苦味酸—酸性品紅
試劑配製:
Weigert氏鐵蘇木素液
兩液需分瓶盛放,A液配製後數天即可用,不宜配製過多,如保存時間過長則染色不良。平時應密封保存,B液配製後立即可用。臨用前將A、B兩液等量混合。
VanGieson氏染液
A液:1%酸性品紅水溶液
B液:苦味酸飽和水溶液(約1.2%)A、B兩液分瓶盛放。臨用前取A液1份,B液9份混合後使用。
操作方法:
1.組織固定於10%甲醛液,常規脫水包埋。
2.切片脫蠟至水。
3.用Weigert氏鐵蘇木素液染5~10分鐘。
4.流水稍洗。
5.1%鹽酸酒精迅速分化。
6.流水沖洗數分鐘。
7.用VanGieson氏液染1~2分鐘。
8.傾去染液,直接用95%酒精分化和脫水(可放入溫箱烤乾後,直接透明封片)。
9.無水酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封固
結果膠原纖維呈鮮紅色,肌纖維,胞質及紅細胞黃色,胞核藍褐色。
(二)、Masson三色染色法
麗春紅酸性品紅液:麗春紅0.7g,酸性品紅0.3g,蒸餾水99ml,冰醋酸1ml苯胺藍液:苯胺藍2g,蒸餾水98ml,醋酸2ml亮綠液:亮綠0.2g,蒸餾水100ml,冰醋酸0.2ml染色步驟:1.切片脫蠟至蒸餾水2.蘇木素染5~10分鐘3.鹽酸酒精分化4.流水藍化,蒸餾水洗(蘇木素可不染)5.麗春紅酸性品紅液中染5~8分鐘6.蒸餾水洗7.1%磷鉬酸中染1~3分鐘8.不用水洗直接入苯胺藍液或亮綠液5分鐘(如染色效果不佳,可在冰醋酸內脫色後重染)9.水速洗,置60℃溫箱中烘乾,二甲苯透明,封固結果:膠原纖維藍色(苯胺藍復染)或綠色(亮綠復染),肌纖維、纖維素紅色。
注意事項:
1.組織用Bouin氏液固定為佳。。2.用l%磷鉬酸處理時可在鏡下控制,見肌纖維呈紅色,膠原纖維呈淡紅色即可。

參考文獻:

1、王伯沄,李玉松,黃高升,張遠強《病理學技術》

2、凌啟波《實用病理特殊染色和組化技》

3、劉介眉等《病理組織染色的理論方法和套用》

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